معلومة

تكوين نوع معين من خلايا الدم البيضاء (WBC)

تكوين نوع معين من خلايا الدم البيضاء (WBC)


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

في دورة علم المناعة المستمرة لدينا علمت أن العدلات تحارب بشكل أساسي العدوى البكتيرية ويتم إنتاج الخلايا الليمفاوية استجابةً للعدوى الفيروسية. علمت أيضًا أن عدد العدلات لدى البشر يبلغ حوالي 70٪ في خلايا الدم البيضاء البشرية بينما تمثل الخلايا الليمفاوية في الحصان 68٪ من WBC. من المفترض أن تجعل البشر أكثر مناعة ضد العدوى البكتيرية ، وبالمثل فإن الخيول تتكيف بشكل أفضل مع الالتهابات الفيروسية. ومع ذلك ، لا يمكنني العثور على أي مادة ذات صلة بما يمكن أن يكون السبب في أن تكوين مكون خلية WBC المتحيز قد تطور في أنواع مختلفة. الرجاء مساعدتي في العثور على المواد ذات الصلة بهذا.


خمسة أنواع من خلايا الدم البيضاء

تعمل خلايا الدم البيضاء (WBCs) كجهات فاعلة رئيسية في جهاز المناعة. تختلف الفئات الخمس من كرات الدم البيضاء ، أو الكريات البيض ، في المظهر والوظيفة. تشمل هذه الفئات العدلات ، وحيدة الخلية ، والخلايا الليمفاوية ، والحمضات ، والخلايا القاعدية. تعمل كرات الدم البيضاء بشكل أساسي على حماية الجسم والدفاع عنه ضد الغزاة المعديين ، بما في ذلك البكتيريا والفيروسات والفطريات والطفيليات. يمكن أن يؤدي انخفاض عدد خلايا الدم البيضاء في الجسم ، والتي تسمى قلة الكريات البيض ، إلى جعل الجسم عرضة لمجموعة متنوعة من الأمراض المعدية.

إذا كنت تعاني من أعراض طبية خطيرة ، فاطلب العلاج الطارئ على الفور.


مقدمة

لإحباط مسببات الأمراض وإبعاد العدوى ، يعتمد المضيفون على جهاز مناعي كفء 1. في حين أن العلاقة بين وظيفة المناعة وبقاء الفرد قد تم توثيقها جيدًا 2،3،4 ، كان هناك القليل نسبيًا من الأبحاث التي تركز على الفروق بين الجنسين في الدفاع المناعي في الحيوانات التي تعيش بحرية.

تم وصف الاختلافات في الاستجابة المناعية بين الجنسين على نطاق واسع عبر الفقاريات. ارتبطت هذه الفروق بين الجنسين تقليديًا بتأثير تعديل المناعة للهرمونات الجنسية ، حيث يعمل الاستروجين الموجود بتركيزات أعلى عند الإناث كمعززات ضعيفة للمناعة ، وتعمل الأندروجينات أعلى عند الذكور كمثبطات للمناعة 5،6. ومع ذلك ، فقد تركزت هذه الدراسات في المقام الأول على البشر وحيوانات المختبر ، في حين أن هناك أدلة متزايدة تشير إلى أن الارتباط بين الهرمونات الجنسية والاختلافات الجنسية في المناعة في البرية ليست بسيطة كما كان يعتقد في البداية. أظهر اثنان من التحليل التلوي المستقل أن التستوستيرون لم يكن له تأثير مثبط للمناعة بشكل عام في الذكور ، وكان التأثير يعتمد على الأصناف المدروسة وما إذا كانت التلاعبات التجريبية تضمنت تركيزات هرمونية أعلى من المستويات الفسيولوجية 7،8. كما تحدت دراسة حديثة أيضًا فكرة التحيزات الجنسية في المناعة من خلال عدم العثور على فرق إجمالي بين الجنسين في تقديرات المناعة في تحليل مقارن واسع النطاق يشمل الفقاريات واللافقاريات 9. ومع ذلك ، كيلي وآخرون. أظهر 9 أن بعض الأنماط تظهر بالفعل عند التركيز على متغيرات مناعية محددة ومجموعات تصنيفية ، مثل الثدييات ، والتي أظهرت تحيزًا قويًا للذكور في السيتوكينات المؤيدة للالتهابات. كيلي وآخرون. 9 لم يجدوا فروقًا جنسية عامة في مناعة الطيور ، لكنهم خلصوا إلى أن الدراسات المستقبلية للاختلافات بين الجنسين في المناعة يجب أن تتضمن متغيرات معروفة بأنها تؤثر على وظائف المناعة ، مثل العمر 10 ، والحالة التغذوية 11 ، والفترة الضوئية 12 ، أو الموسمية 13. المتغير الأخير ذو صلة خاصة ، لأن التغيرات الموسمية ، ولا سيما الانتقال بين فترة عدم التكاثر وفترة التكاثر ، تنطوي على تغييرات فسيولوجية وسلوكية كبيرة. قد تشمل أيضًا تحولات بيئية واضحة ، لا سيما في الأنواع التي تهاجر بين مناطق التكاثر وغير المتكاثر ، كما هو الحال في العديد من أنواع الطيور. وفقًا لذلك ، وجدت العديد من الدراسات تغييرات مهمة خاصة بالجنس في المناعة بين فترة عدم التكاثر والتكاثر في الطيور. على سبيل المثال ، Hõrak et al. 14 وجد أن الإناث كبيرة الثدي ، باروس الكبرى، كان لديها عدد من الخلايا الليمفاوية المنتشرة أكثر من الذكور في الربيع ولكن ليس في الصيف. ميريل وآخرون. وجد 15 أن ذكر طيور البقر بنية الرأس ، مولوثروس أتيرأظهرت قدرة مبيد للجراثيم أعلى من الإناث خلال فترة التكاثر مقارنة بفترة عدم التكاثر. الأسباب الكامنة وراء مثل هذه المناعة الموسمية المعقدة والخاصة بالأنواع والجنس ليست مفهومة تمامًا. تشمل التفسيرات المتكررة تكاليف الطاقة والتغذية الخاصة بالجنس والتي يمكن مقايضتها مقابل المناعة 16،17،18 ، مما يؤدي إلى ضعف المناعة في الجنس مع زيادة إنفاق الطاقة (على سبيل المثال ، عروض التودد ، إنتاج البيض ، رعاية الوالدين 19،20 ، 21).

بدلاً من ذلك ، قد يتم اختراق الدفاع المناعي في المواقف التي تسبب إجهادًا أو توترًا ، أي الإجهاد 22. يمكن أن يلعب الكورتيكوستيرون ، وهو الجلوكوكورتيكويد المنتشر الرئيسي في الطيور ، دورًا مهمًا هنا. أولاً ، لأن الكورتيكوستيرون متورط في تنظيم التمثيل الغذائي 23 ، وثانيًا ، نتيجة لزيادة إنتاج الكورتيكوستيرون الناجم عن الإجهاد (على سبيل المثال أثناء الدفاع عن المنطقة) الذي يمكن أن يثبط وظيفة المناعة. ومع ذلك ، فإن التحليل الشامل الذي يبحث في وقت واحد عن المناعة المرتبطة بالموسمية والخاصة بالجنس عبر أنواع الطيور غير متوفرة إلى حد كبير. أيضًا ، من غير المعروف ما إذا كانت الأنماط المحتملة الخاصة بالجنس أو الأنماط الموسمية متسقة بين المعلمات المناعية 27.

هنا ، من أجل فهم التباين في وظيفة المناعة عند الطيور بشكل أفضل ، أجرينا تحليلًا تلويًا لاختبار الفروق الموسمية (موسم التكاثر مقابل موسم عدم التكاثر) والاختلافات الجنسية في المناعة عبر أنواع الطيور. نظرًا للتأثيرات المعروفة لتطور الجنين والأسر على المناعة 28،29 ، فقد قصرنا تحليلنا على البيانات من الطيور البالغة التي تعيش بحرية. قمنا بتضمين معلومات من تسعة قياسات تميز الحالة المناعية: التكرار النسبي لأربعة أنواع من خلايا الدم البيضاء (الخلايا غير المتجانسة ، الخلايا الليمفاوية ، الضامة ، الحمضات) ، نسبة الخلايا غير المتجانسة / الخلايا الليمفاوية (نسبة H / L ، مؤشر الإجهاد المناعي بوساطة الجلوكوكورتيكويد ) ، وأربعة مؤشرات استجابة مناعية مستخدمة على نطاق واسع (اختبار phytohaemagglutinin ، ومقايسة قدرة قتل البكتيريا ، ومقايسة انحلال الدم ، ومقايسة التراص الدموي). لكل من هذه المعلمات المناعية التسعة ، قدرنا وسائل التحليل التلوي الإجمالية (أي تقديرات التحيزات المناعية الخاصة بالجنس). بناءً على الدراسات السابقة 9،30 ، لم نتوقع أي فرق بين الجنسين في مستويات خلايا الدم البيضاء وتحيز صغير للإناث في مؤشرات الاستجابة المناعية. بعد ذلك ، قمنا بتفصيل هذه التقديرات الإجمالية حسب الموسم ، وقمنا بحساب تقدير واحد لفترة عدم التكاثر وآخر لفترة التكاثر. سمح لنا هذا باختبار ما إذا كانت هذه التقديرات الموسمية متحيزة جنسياً ، وما إذا كان للموسم ، كمتغير ، تأثير كبير على معايير المناعة. نظرًا لأن التكاثر غالبًا ما يؤدي إلى زيادة عبء العمل وزيادة متطلبات الطاقة مقارنة بالطيور غير المتكاثرة في فصل الشتاء 16 ، فقد توقعنا أن تختلف الفترتان عن بعضهما البعض ، وأن يؤثر الموسم بشكل كبير على المتغيرات المناعية.

علاوة على ذلك ، استخدمنا تقديرات الأفراد من الذكور والإناث لاختبار ما إذا كان بإمكان الجنسين الاستجابة بشكل مختلف للانتقال بين الفصول. الذكور بشكل عام أكثر انخراطًا في سلوك المغازلة والعدوانية داخل الجنس ، لذلك ، توقعنا احتمال حدوث كبت مناعي بوساطة الإجهاد 26 عند الذكور يمكن أن يفوق كبت مناعة بديل بسبب المقايضات النشطة في الإناث 21. وبالتالي ، في الانتقال من عدم التكاثر إلى التكاثر ، قد تظهر تغيرات أقوى في تقديرات المناعة للذكور من الإناث.


نتائج

تشير المعلمات السريرية المختبرة إلى الاستجابة الفسيولوجية أثناء التعرض لهرمون HH

نظرة عامة مفصلة على المعلمات السريرية في الأساس (BL) ، 24 ساعة و 72 ساعة مبينة في الجدول 1. بعد الصعود المباشر إلى علو شاهق ، تشبع الأكسجين المحيطي (SpO)2) أظهر تعديلاً هامًا بمرور الوقت (ANOVA ص & lt 0.001) بتخفيض عند 24 ساعة (11٪ ، ص & lt 0.001) وزيادة تدريجية بين 24 ساعة و 72 ساعة (+ 5٪ ، ص = 0.001). SpO2 لم يعد إلى القيم الأساسية لأي مشارك أثناء الإقامة على مسافة 3800 م. زاد معدل ضربات القلب (HR) من القيم الأساسية حتى 24 ساعة (+ 35٪ ، ص & lt 0.001) ، ثم انخفضت الموارد البشرية (10٪ ، ص & lt 0.24) ، تظل أعلى مقارنة بخط الأساس (+ 21٪ ، ص & lt 0.006). وبالمثل ، تم تحسين معدل التنفس (BR) خلال 24 ساعة وبعد 72 ساعة مقارنة بقيم خط الأساس (على التوالي + 22٪ ، ص = 0.01 و + 19٪ ، ص = 0.02). كان لجميع الأشخاص الذين شملهم تحليل البيانات قيمة نقاط بحيرة لويز (LLS) و 3 لتر خلال ثلاثة أيام من التعرض لنقص الأكسجة في الارتفاعات العالية.

ينتج عن التعرض لـ HH تعبير تفاضلي عن TFs الرئيسية في كرات الدم البيضاء البشرية التي هي أيضًا مرتبطة بعرض الوقت

التعبير الجيني لـ TFs المختلفة (HIF-1α, HIF-2α, NRF2 والوحدة الفرعية p65 من NF- B) عند خط الأساس (262 م) وبعد 24 ساعة و 72 ساعة من التعرض للارتفاعات العالية (3830 م). HIF-1α قدمت مستويات mRNA علاقة مكافئة مع وقت التعرض (72 ساعة) لـ HH (ANOVA ص = 0.001). خاصة، HIF-1α زادت مستويات الرنا المرسال بشكل ملحوظ بعد 24 ساعة (+ 59٪ ، ص = 0.01) من التعرض لنقص الأكسجين ، وعاد لاحقًا إلى قيم مماثلة لمستويات خط الأساس بعد 72 ساعة (الجدول التكميلي S1 والشكل 1A). HIF-2α زادت مستويات الرنا المرسال باستمرار بمرور الوقت (ANOVA ص = 0.001) ، ووصلت إلى الذروة بعد 72 ساعة من التعرض (+ 41٪ ، ص & lt 0.001) (الجدول التكميلي S1 والشكل 1 ب). وبالمثل ، فإن NRF2 زاد مستوى الرنا المرسال باستمرار أثناء التعرض لنقص الأكسجة (ANOVA ص = 0.04) ، وتصل إلى الذروة بعد 72 ساعة (+ 87٪ ، ص & lt 0.001) (الجدول التكميلي S1 والشكل 1C). أخيرًا ، بالمقارنة مع القيم الأساسية ، ص 65 لم تكن مستويات الرنا المرسال مختلفة بشكل كبير بعد 24 ساعة أو 72 ساعة من التعرض للارتفاعات العالية (ANOVA ص = 0.71) (الجدول التكميلي S1 والشكل 1D).

القياس الكمي النسبي لمستويات mRNA لعوامل النسخ HIF-1α, HIF-2α, NRF2 و NF- B (ص 65) في خلايا الدم البيضاء أن منبه نقص الأكسجة الناقص يحرض أنماط تعبير TF مختلفة تعتمد على الوقت. (أ) HIF-1α يُظهر ذروة النسخ خلال 24 ساعة ، بينما HIF-2α (ب) و NRF2 (ج) إظهار ذروة التعبير بعد 72 ساعة بعد بداية التحفيز. على العكس من ذلك ، فإن NF- B لا يظهر الجين اختلافات في تعبيره أثناء الدراسة (د). تم حساب RQ كتغيير أضعاف باستخدام طريقة 2 - (ΔΔCt). نتائج mRNA هي متوسط ​​القيم التي تم تقييمها بعد ثلاثة اختبارات تفاعل. القيم تعني ± SD. *ص & lt 0.05 و **ص & lt 0.001 بعد تصحيح Bonferroni.

يشير القياس المباشر للسيتوكينات المنتشرة المؤيدة للالتهابات أثناء التعرض الطويل لـ HH إلى وساطة سريعة للحالة الالتهابية في مستجيبات HA

تحليل التعبير الجيني للعلامات المؤيدة للالتهابات (IL-1β و IL-6) عند خط الأساس (262 م) وبعد 24 ساعة و 72 ساعة من التعرض للارتفاعات العالية (3830 م). IL-1β و IL-6 لم يتم تعديل مستويات mRNA بشكل ملحوظ خلال فترة 72 ساعة (ANOVA ص = 0.65 و ANOVA ص = 0.60 على التوالي) في كرات الدم البيضاء (الجدول التكميلي S1 والشكل 2 أ ، ب). على العكس من ذلك ، تغيرت مستويات البلازما IL-1β بشكل ملحوظ بمرور الوقت (ANOVA ص = 0.001). على وجه التحديد ، زادت مستويات البلازما IL-1β بعد 24 ساعة (+ 25٪ ، ص & lt 0.02) ، وعاد إلى خط الأساس بعد 72 ساعة (−2٪ ، ص = 0.77) (الجدول التكميلي S2 والشكل 2C). لم تتغير مستويات البلازما IL-6 بشكل ملحوظ بمرور الوقت (ANOVA ص = 0.07) (الجدول التكميلي S2 والشكل 2 د). ومع ذلك ، لاحظنا انخفاضًا كبيرًا في IL-6 عند 72 ساعة من التعرض للارتفاعات العالية ، مقارنة بالقيم المبلغ عنها بعد 24 ساعة (−5 ٪ ، ص = 0.04) (الجدول التكميلي S2 والشكل 2D). تم اعتبار كل من مستويات البلازما من IL-1β و IL-6 في المعدل الطبيعي لعامة السكان طوال فترة الدراسة بأكملها 41،42. في غضون 24 ساعة من التعرض ، تلقى مشاركان جرعة واحدة من الباراسيتامول (500 مجم). تم إجراء تعديل النتائج لاستخدام الباراسيتامول ، ولم يتم الحصول على تعديلات كبيرة (البيانات غير معروضة).

يكشف القياس الكمي النسبي لمستويات الرنا المرسال ومستويات بروتين البلازما للسيتوكينات المؤيدة للالتهابات في خلايا الدم البيضاء عن زيادة طفيفة في الحالة الالتهابية أثناء التعرض لهرمون HH. (أ,ب) IL-1β و IL-6 لا يكشف القياس الكمي للـ mRNA عن تباين كبير في إنتاج الرنا المرسال لكل من السيتوكينات أثناء تحفيز نقص الأكسجة بمرور الوقت. نتائج mRNA هي متوسط ​​القيم التي تم تقييمها بعد ثلاثة اختبارات تفاعل. تم حساب القياس الكمي النسبي لتعبير mRNA للسيتوكينات المؤيدة للالتهابات كتغيير أضعاف باستخدام طريقة 2 - (Ct). القيم تعني ± SD. (ج,د) أظهر البروتين المتداول IL-1β فقط زيادة عابرة طفيفة بعد 24 ساعة من التعرض HH. القيم المطلقة لكل من البروتينات المتداولة هي في النطاق الطبيعي لعامة السكان. يتم تمثيل الوسيط (النطاق المستمر) والمتوسط ​​(النطاق المنقط) داخل المربعات. * P & lt 0.05 بعد تصحيح Bonferroni.

يؤدي التعرض المباشر لمدة 24 ساعة إلى HH إلى زيادات ملحوظة في ROS و TBARS و 8-isoPGFα و 8-OHdG والكمبيوتر الشخصي وما يصاحب ذلك من انخفاض في TAC

لتحديد المؤشرات الحيوية للإجهاد التأكسدي عند خط الأساس وأثناء التعرض للارتفاعات العالية ، قمنا بقياس مستويات إنتاج ROS ، و TBARS (المواد التفاعلية لحمض الثيوباربيتوريك ، وعلامات بيروكسيد الدهون) ، و 8-isoprostanes (8-isoPGF2α ، ومنتجات أكسدة الدهون ووسطاء المرض المحتملين ) ، 8-hydroxy-2 ′ -deoxyguanosine (8-OHdG ، منتجات أكسدة الحمض النووي) ، تراكيز PC (البروتين المؤكسد الكربوني) و TAC (إجمالي القدرة المضادة للأكسدة ، مجموع مضادات الأكسدة المائية والدهنية منخفضة الوزن الجزيئي القابلة للذوبان) مجموعة كاملة (الجدول التكميلي S3). كانت مستويات المؤشرات الحيوية OxS عند خط الأساس (262 م) متوافقة مع القيم السابقة المقدرة للسكان الأصحاء 43. تم الحصول على قيم المستوى الأساسي لـ 8-isoPGF2α و 8-OHdG التي تم أخذها في الاعتبار للتحليل الإحصائي من مجموعة مطابقة من عامة السكان.

أدى التعرض شبه الحاد لـ HH (24 ساعة) إلى تغييرات في مؤشرات OxS وهي: زيادة مستويات إنتاج ROS كما تم الكشف عنها بواسطة EPR و TBARS و 8-isoPGF2α و 8-OHdG و PC ، بالإضافة إلى انخفاض في إجمالي سعة مضادات الأكسدة (TAC) ). كانت التغييرات قابلة للاكتشاف ووصلت إلى ذروة + 218٪ (ROS) ، + 70٪ (TBARS) ، + 54٪ (8-isoPGF2α) و + 61٪ (كمبيوتر) بعد 24 ساعة (ص & lt 0.001 ، ص & lt 0.001 ، ص = 0.001, ص & lt 0.001 على التوالي) مقارنة بخط الأساس (الجدول التكميلي S3 والشكل 3). بلغت مستويات علامة 8-OHdG لأضرار الحمض النووي ذروتها بعد 24 ساعة (+ 178 ٪) وكان التغيير مهمًا قليلاً فقط (ص = 0.024) مقارنة بـ BL. أظهرت قيم TAC نمطًا معاكسًا تمامًا بمرور الوقت (ANOVA ص & lt 0.001) بأقل مستوى 60٪ بعد 24 ساعة (ص & lt 0.001) (الجدول التكميلي S3 والشكل 3) وعدم استعادة المستويات القاعدية لنشاط مضادات الأكسدة بعد فترة 72 ساعة من التعرض (−25٪ ، ص = 0.001). بالإضافة إلى ذلك ، تغير معدل إنتاج ROS و TBARS و 8-isoPGF2α و 8-OHdG وتركيزات الكمبيوتر بشكل كبير بمرور الوقت من التعرض لـ HH خلال 72 ساعة (ANOVA ص & lt 0.001 ، ص & lt 0.001 ، ص = 0.002, ص = 0.011 و ص & lt 0.001 على التوالي) (الجدول التكميلي S3 والشكل 3).

تُظهر مخططات Box و Whisker التأثيرات الملحوظة للتعرض لنقص الأكسجة الناقص الضغط (3830 م) على إنتاج ROS والمؤشرات الحيوية النسبية للضرر التأكسدي. يؤدي التعرض المباشر لمدة 24 ساعة إلى HH إلى زيادات ملحوظة في ROS و TBARS و 8-isoPGF α و 8-OHdG و PC وما يصاحب ذلك من انخفاض في TAC. بعد 72 ساعة من التعرض لنقص الأكسجة ، هناك استرداد جزئي للظروف القاعدية مع تحسن طفيف في TAC وتقليل ROS ومقادير الأضرار الخلوية. يتم تمثيل الوسيط (النطاق المستمر) والمتوسط ​​(النطاق المنقط) داخل المربعات. *ص & lt 0.05 و **ص & lt 0.001 بعد تصحيح Bonferroni.

الارتباط بين التعبير الجيني TFs والعلامات الالتهابية والأكسدة والمتغيرات السريرية

اخترنا إجراء تحليل الارتباط من أجل التحقيق في الميل لإظهار تعبير منسق بين TFs ، والجينات الأخرى المدروسة (أي IL-1β و IL-6) المتعلقة بعلامات الثيران والالتهابات المنتشرة (مثل IL-1β و IL-6) بمرور الوقت. على وجه الخصوص ، تم اختيار تحليل الارتباط لتوفير المعلومات المتعلقة بالعمليات البيولوجية التي كانت مترابطة والتي أظهرت الترابط. كان الهدف الرئيسي هو تحديد التفاعلات المحتملة التي قد تكون ذات أهمية ميكانيكية في المرحلة المبكرة من استجابة الإنسان للتعرض الناقص للأكسجين.

أظهرت المتغيرات السريرية وجود علاقة قوية مع ROS و TAC ولكن ليس مع TFs وعلامات الالتهاب

SpO2 أظهر ارتباطات قوية مع كل من إنتاج ROS (ANOVA r = −0.76 ، ص & lt 0.001) و TAC (ANOVA r = +0.82 ، ص & lt 0.001) بمرور الوقت (الجدول 2). تم ربط TAC و ROS أيضًا (ANOVA r = −0.66 ، ص & lt 0.001) (الجدول 2 والشكل التكميلي S1).

SpO2 أظهر ارتباطًا سلبيًا ولكن هامشيًا مع ثلاثة من أصل أربعة TFs تم فحصها (HIF-1α, NF- B و NRF2) (ANOVA r = −0.41 ، ص = 0.03 أنوفا ص = −0.47 ، ص = 0.01 و ANOVA r = −0.42 ، ص = 0.03 على التوالي).

SpO2 أظهر ارتباطًا هامشيًا مع مستويات بروتين IL-1β و IL-6 في البلازما (ANOVA r = −0.46 ، ص = 0.02 أنوفا r = −0.44 ، ص = 0.02). أظهرت تركيزات البروتين IL-1β و IL-6 ارتباطًا هامشيًا هامشيًا مع ROS (ANOVA r = +0.47 ، ص = 0.02 و r = +0.34 ، ص = 0.09 على التوالي) و TAC (ANOVA r = −0.35 ، ص = 0.08 و r = −0.47 ، ص = 0.02 على التوالي) بمرور الوقت. تم تحديد علاقة ارتباط هامشية فقط بين IL-1β مرنا و IL-6 مرنا (أنوفا ص = +0.40 ، ص = 0.04) في كرات الدم البيضاء. على العكس من ذلك ، لم يلاحظ أي ارتباط بين الرنا المرسال للاثنين من الإنترلوكينات التي تم فحصها وتركيزات البروتين في البلازما (ANOVA r = +0.32 ، ص = 0.12 و ANOVA r = −0.04 ، ص = 0.84 على التوالي). أخيرًا ، أظهر بروتين IL-6 ارتباطًا سلبيًا هامشيًا مع TAC (ANOVA r = −0.47 ، ص = 0.02).

أظهرت عوامل النسخ ارتباطًا تفاضليًا مع بعضها البعض ، وعلامات OxS والمتغيرات الالتهابية

HIF-1α لم يكن مرنا مرتبطا مع HIF-2α (أنوفا ص = .190.19 ، ص = 0.34) و NRF2 مرنا (أنوفا ص = 0.29 ، ص = 0.15) في حين HIF-2α ارتبطت مستويات الرنا المرسال بشكل إيجابي مع NRF2 التعبير الجيني بمرور الوقت (ANOVA r = +0.58 ، ص = 0.002) (الجدول 2 والشكل التكميلي S1).

HIF1α ارتبط mRNA بشكل إيجابي مع ROS الإضافي (ANOVA r = +0.62 ، ص & lt 0.001) (الجدول 2). HIF-2α أظهرت مستويات الرنا المرسال علاقة ذات دلالة هامشية مع IL-6 مستويات mRNA بمرور الوقت (ANOVA r = +0.46 ، ص = 0.02) (الجدول 2 والشكل التكميلي S1).

NRF2 كان مستوى mRNA مرتبطًا سلبًا بـ TAC (ANOVA r = −0.43 ، ص = 0.03). تم تحديد ارتباطات كبيرة تشمل NF- B مرنا مع TAC و ROS (ANOVA r = −0.59 ، ص = 0.002 و ANOVA r = +0.46 ، ص = 0.02). تم تحديد الارتباطات الإيجابية الهامشية فقط التي تشمل NF- B مرنا وإنترلوكينات البلازما IL-1β و IL-6 العمل الإضافي (ANOVA r = +0.49 ، ص = 0.01 وأنوفا r = +0.47 ، ص = 0.02 على التوالي).


يُظهر نموذج جديد لفيروس نقص المناعة البشرية أن الفيروس لا يقتل خلايا الدم البيضاء ، بل يقتلها فقط

ANN ARBOR - طورت عالمة جامعة ميشيغان دينيس كيرشنر نموذجًا رياضيًا جديدًا يُظهر كيف أن فيروس نقص المناعة البشرية - الفيروس الذي يسبب الإيدز - يدمر ببطء جهاز المناعة لدى ضحيته عن طريق تسريع عملية طبيعية تسمى homing ، والتي تحول الدم الأبيض الخلايا من مجرى الدم إلى الجهاز الليمفاوي.

زيادة فهم العلاقة المعقدة بين فيروس نقص المناعة البشرية وجهاز المناعة أمر مهم ، لأنه سيساعد العلماء على تطوير علاجات أكثر فعالية للإيدز واقتراح أهداف جديدة للأدوية العلاجية.

يقول مايلز و. أستاذ علم الأحياء الدقيقة في فرع جامعة تكساس الطبي في جالفيستون.

تم تطويره بالتعاون مع G.F. ويب ، دكتوراه ، من جامعة فاندربيلت ، يؤكد نموذج كيرشنر صحة نظرية التوجيه لتقدم فيروس نقص المناعة البشرية ، والتي اقترحها كلويد وزملاؤه لأول مرة. تم نشر نتائج النموذج في عدد 1 أغسطس من مجلة الإيدز.

يعتقد العديد من العلماء أن فيروس نقص المناعة البشرية يدمر جهاز المناعة من خلال مهاجمة خلايا الدم البيضاء المسماة CD4 أو الخلايا التائية المساعدة في مجرى الدم. لكن كيرشنر وكلويد يؤكدان أن الفعل المميت لفيروس نقص المناعة البشرية أكثر دقة وغير مباشر.

يوضح نموذجهم أن خلايا CD4 تدمر نفسها في الواقع في الجهاز الليمفاوي. تأتي الوفاة نتيجة التعرض لإشارات كيميائية حيوية تشارك في عملية التوجيه ، والتي تؤدي إلى موت الخلايا المبرمج أو انتحار الخلية.

"نماذج فيروس نقص المناعة البشرية السابقة ركزت على ما يحدث في مجرى الدم ، لكن الإجراء الحقيقي يكمن في الجهاز الليمفاوي" ، كما يقول كيرشنر ، دكتوراه ، أستاذ مساعد في علم الأحياء الدقيقة والمناعة في كلية الطب U-M. "تموت نسبة صغيرة جدًا من الخلايا بسبب موت الخلايا المبرمج يوميًا ، ولكن على مدار سبع سنوات ، تموت بنسبة تصل إلى 100 بالمائة تقريبًا."

تتوافق النتائج المأخوذة من نموذج UM مع ما يحدث عند الأشخاص ، وفقًا لكلويد. تظهر البيانات المستمدة من الدراسات السريرية على مرضى مصابين بفيروس نقص المناعة البشرية أن عدد خلايا CD4 غير المصابة في دمائهم ينخفض ​​إلى 15 في المائة من المعدل الطبيعي خلال فترة سبع سنوات.

عندما يرتبط فيروس نقص المناعة البشرية بخلية CD4 ، يمكن أن يحدث واحد من ثلاثة أشياء ، وفقًا لكيرشنر. أولاً ، يمكن أن تصاب الخلية بنشاط وتتحول إلى مصنع خلوي ينتج المزيد من الفيروسات. ثانيًا ، يمكن أن تصاب الخلية المناعية بالعدوى الكامنة ، حيث يدخل الفيروس داخل نواة الخلية ، لكنه يظل كامنًا. ثالثًا ، وهو الأكثر شيوعًا ، يمكن أن تصاب خلية CD4 بشكل مجهض. في هذه الحالة ، يدخل الفيروس إلى سيتوبلازم الخلية ، لكنه لا يدخل النواة.

يوضح كيرشنر: "عندما يرتبط فيروس HIV بخلية CD4 ، فإن العملية تنشط جزيء مستقبل يسمى L-selectin على غشاء الخلية ، والذي يرسل إشارات لخلية CD4 إلى موطن النظام الليمفاوي". "إذا تمكنا من منع هذه الإشارة ، فيمكننا الحفاظ على خلايا CD4 السليمة."

في البحث المستقبلي ، يخطط كيرشنر لنمذجة دور المستقبلات المشتركة المشاركة في ارتباط فيروس نقص المناعة البشرية بخلايا CD4. تختلف شدة العدوى باختلاف المستقبل المشترك الذي يختاره الفيروس. كما تخطط أيضًا لاستكشاف الاستجابة المناعية لفيروس نقص المناعة البشرية ، وكيف تحدد الأنواع المختلفة من الاستجابات المناعية ، المعروفة باسم استجابات TH1 أو TH2 ، تطور المرض.

تقول: "أعاد عمل مايلز كلويد مفهوم دوران الخلايا الليمفاوية ، والذي كان موضوعًا ساخنًا في السبعينيات ، إلى دائرة الضوء العلمية". "يمكن أن تكون هناك تطبيقات للعديد من الأمراض الأخرى."

تم تمويل تطوير النموذج الرياضي لتطور فيروس نقص المناعة البشرية من قبل المعهد الوطني للقلب والرئة والدم التابع للمعاهد الوطنية للصحة ، ومؤسسة العلوم الوطنية والمؤسسة الأمريكية لأبحاث الإيدز.

مصدر القصة:

المواد المقدمة من جامعة ميشيغان. ملاحظة: يمكن تعديل المحتوى حسب النمط والطول.


تكوين نوع معين من خلايا الدم البيضاء (WBC) - علم الأحياء

تحية للجميع.
لم نقم مطلقًا بإحصاء WBC يدويًا من قبل وقد طلب مني مستشاري ذلك
الحصول على عدد كرات الدم البيضاء (في المقام الأول nuetrophils والخلايا الليمفاوية) في رايت
لطخات الدم المحيطية الملطخة. ما هو البروتوكول العام للدليل
عدد؟ هل تحسب علاقة inb الخاصة بـ WBC بـ RBCs أو WBCs فقط ، الكل
شريحة ، أو أقسام تمثيلية فقط؟

PS - هذا لعينة الفئران ، وليس الإنسان

هل ما يريده مشرفك هو تفاضل WBC؟ إذا كان الأمر كذلك ، فأنت تحصي 100
خلايا تحدد كل نوع مختلف من الخلايا وتبلغ عن النسبة المئوية
من كل نوع خلية. يجب إجراء عدد خلايا الدم البيضاء
على عينة دم كاملة - وليس مسحة محيطية - لا توجد طريقة لذلك
قم بقياس الحجم بخلاف ذلك حيث يتم الإبلاغ عن عدد الخلايا كعدد الخلايا
لكل حجم تم قياسه.

-----رسالة أصلية-----
من: histonet-***@lists.utsouthwestern.edu
[mailto: histonet - *** @ lists.utsouthwestern.edu] نيابة عن Missy
تاريخ الإرسال: الثلاثاء 26 سبتمبر 2006 الساعة 10:25 صباحًا
إلى: ***@lists.utsouthwestern.edu
الموضوع: [Histonet] عدد كرات الدم البيضاء

تحية للجميع.
لم نقم مطلقًا بإحصاء WBC يدويًا من قبل وقد سألني مستشاري
إلى
الحصول على عدد كرات الدم البيضاء (في المقام الأول nuetrophils والخلايا الليمفاوية) في رايت
لطخات الدم المحيطية الملطخة. ما هو البروتوكول العام ل
كتيب
عدد؟ هل تحسب علاقة inb الخاصة بـ WBC بـ RBCs أو WBCs فقط ، الكل
شريحة ، أو أقسام تمثيلية فقط؟

PS - هذا لعينة الفئران ، وليس الإنسان

هل هذا نوع من المشروع لفصل؟ إذا لم يكن كذلك ، فقم بتسليمها إلى
أمراض الدم. إذا كان الأمر كذلك ، احصل على كتاب نصي عن التكنولوجيا الطبية وابحث عن الدم
عد الخلايا. للقيام بذلك بشكل صحيح يتطلب شرائح عد خاصة
محفور بشبكات.

-----رسالة أصلية-----
من: histonet-***@lists.utsouthwestern.edu
[mailto: histonet - *** @ lists.utsouthwestern.edu] نيابة عن Missy
تاريخ الإرسال: الثلاثاء 26 سبتمبر 2006 الساعة 7:25 صباحًا
إلى: ***@lists.utsouthwestern.edu
الموضوع: [Histonet] عدد كرات الدم البيضاء

تحية للجميع.
لم نقم مطلقًا بإحصاء WBC يدويًا من قبل وقد سألني مستشاري
للحصول على عدد كرات الدم البيضاء (الخلايا الدقيقة والخلايا الليمفاوية في المقام الأول) في
لطخات الدم المحيطية الملطخة في رايت. ما هو البروتوكول العام
لحساب يدوي؟ هل تحسب علاقة inb الخاصة بـ WBC بـ كرات الدم الحمراء أم فقط
كرات الدم البيضاء ، الشريحة بأكملها ، أو الأقسام التمثيلية فقط؟

PS - هذا لعينة الفئران ، وليس الإنسان

يبدو أن مستشارك يريد WBC "تفاضليًا" إذا كنت تحاول ذلك
للقيام بذلك على مسحة الدم المحيطية الملطخة. للقيام بذلك سوف تحتاج
نوع من العداد التفاضلي اليدوي متعدد المفاتيح (مثال:
http://stores.implex.net/minnesotamedical/product_info.php؟cPath=205_174_176
& ampproducts_id = 1726)

للقيام بذلك ، تقوم بتعيين مفتاح على العداد لخلية بيضاء محددة (أي
nuetrophils) وتفعل الشيء نفسه لبقية المفاتيح مع مختلف
أنواع الخلايا البيضاء. ثم تقوم بمسح الشريحة ضوئيًا وتحسب اللون الأبيض المختلف
خلايا (تثقيب المفتاح المناسب لكل منها) حتى تصل إلى إجمالي عدد
100 خلية (لا تولي اهتماما للخلايا الحمراء). ثم الفارق الخاص بك
يكون عدد الخلايا المحددة التي يتم عدها صريحة كنسبة مئوية. مثال،
لقد أحصيت 62 نويتروفيلز و 38 خلية ليمفاوية = 62٪ نيتورو و 38٪ ليمف
على التوالى.

لعمل WBC إجمالي ، يجب أن يكون لديك مقياس الكريات الدموية (كما كان Tim
نتحدث عن) ، ماصات hemo معايرة ، كاشف lysing ، محلول ملحي عادي
مخفف ، ودم كامل. سوف تخفف الدم كله إلى الصحيح
تخفيف مع محلول ملحي عادي ، إضافة كاشف lysing لتدمير اللون الأحمر
الخلايا ، وتحميل عداد الكريات ، وإحصاء جميع الخلايا البيضاء التي تراها.

أو كما اقترح توم. تسليم المهمة إلى قسم أمراض الدم.
-)

Ford M. Royer، MT (ASCP)
مدير منتجات الأنسجة
مينيسوتا ميديكال ، إنك.
7177 Madison Ave. W.
جولدن فالي ، مينيسوتا 55427-3601
الخلية: 612-839-1046
هاتف: 763-542-8725
الفاكس: 763-546-4830
البريد الإلكتروني: ***@bitstream.net

-----رسالة أصلية-----
من: histonet-***@lists.utsouthwestern.edu
[mailto: histonet - *** @ lists.utsouthwestern.edu] بالنيابة عن Morken ، Tim
تاريخ الإرسال: الثلاثاء 26 سبتمبر 2006 الساعة 11:21 صباحًا
إلى: Missy ***@lists.utsouthwestern.edu
الموضوع: RE: [Histonet] عدد كرات الدم البيضاء

هل هذا نوع من المشروع لفصل؟ إذا لم يكن كذلك ، فقم بتسليمها إلى
أمراض الدم. إذا كان الأمر كذلك ، احصل على كتاب نصي عن التكنولوجيا الطبية وابحث عن الدم
عد الخلايا. للقيام بذلك بشكل صحيح يتطلب شرائح عد خاصة
محفور بشبكات.

-----رسالة أصلية-----
من: histonet-***@lists.utsouthwestern.edu
[mailto: histonet - *** @ lists.utsouthwestern.edu] نيابة عن Missy
تاريخ الإرسال: الثلاثاء 26 سبتمبر 2006 الساعة 7:25 صباحًا
إلى: ***@lists.utsouthwestern.edu
الموضوع: [Histonet] عدد كرات الدم البيضاء

تحية للجميع.
لم نقم مطلقًا بإحصاء WBC يدويًا من قبل وقد سألني مستشاري
للحصول على عدد كرات الدم البيضاء (الخلايا الدقيقة والخلايا الليمفاوية في المقام الأول) في
لطخات الدم المحيطية الملطخة في رايت. ما هو البروتوكول العام
لحساب يدوي؟ هل تحسب علاقة inb الخاصة بـ WBC بـ كرات الدم الحمراء أم فقط
كرات الدم البيضاء ، الشريحة بأكملها ، أو الأقسام التمثيلية فقط؟

PS - هذا لعينة الفئران ، وليس الإنسان

حظًا سعيدًا في العثور على مقياس دم و / أو أي ماصات تمت معايرتها. لنا
انتهى الأمر بعرض "الأدوات والمعدات العتيقة". هذا
أفضل مكان لهم (يتحدث كديناصور قديم
تعلمت كيفية استخدامها).

Jacquie Poteete MT (ASCP) QIHC
كبير تقني طبي ، مختبر IHC
مستشفى القديس فرنسيس ، تولسا ، أوكلاهوما

-----رسالة أصلية-----
من: histonet-***@lists.utsouthwestern.edu
[mailto: histonet - *** @ lists.utsouthwestern.edu] نيابة عن شركة Ford
روير
تاريخ الإرسال: الثلاثاء 26 سبتمبر 2006 2:24 مساءً
إلى: 'Missy' ***@lists.utsouthwestern.edu
الموضوع: RE: [Histonet] عدد كرات الدم البيضاء

يبدو أن مستشارك يريد WBC "تفاضليًا" إذا كنت تريد ذلك
محاولة القيام بذلك على مسحة الدم المحيطية الملطخة. لفعل هذا لك
قد يحتاج إلى نوع من العداد التفاضلي اليدوي متعدد المفاتيح (مثال:
http://stores.implex.net/minnesotamedical/product_info.php؟cPath=205_174
_176
& ampproducts_id = 1726)

للقيام بذلك ، تقوم بتعيين مفتاح على العداد لخلية بيضاء معينة
(بمعنى آخر.
nuetrophils) وتفعل الشيء نفسه لبقية المفاتيح مع مختلف
أنواع الخلايا البيضاء. ثم تقوم بمسح الشريحة ضوئيًا وتحسب الفرق
خلايا بيضاء (تثقيب المفتاح المناسب لكل منها) حتى تصل إلى المجموع
عدد الخلايا 100 (لا تولي اهتماما للخلايا الحمراء). لك
سيكون التفاضل هو عدد الخلايا المحددة التي يتم عدها صريحًا
كنسبة مئوية. على سبيل المثال ، أحصيت 62 نوعًا من الخلايا الدقيقة و 38 خلية ليمفاوية
= 62٪ نتورو و 38٪ ليمف على التوالي.

لعمل WBC إجمالي ، يجب أن يكون لديك مقياس الكريات الدموية (كما كان Tim
نتحدث عن) ، ماصات hemo معايرة ، كاشف lysing ، طبيعي
مخفف ملحي والدم الكامل. سوف تخفف الدم كله
التخفيف المناسب بالمحلول الملحي العادي ، أضف كاشف اللايسينج إليه
تدمير الخلايا الحمراء ، وتحميل عداد الكريات ، وعد كل البيض
الخلايا التي تراها.

أو كما اقترح توم. إعطاء المهمة لأمراض الدم
قسم.
-)

Ford M. Royer، MT (ASCP)
مدير منتجات الأنسجة
مينيسوتا ميديكال ، إنك.
7177 Madison Ave. W.
جولدن فالي ، مينيسوتا 55427-3601
الخلية: 612-839-1046
هاتف: 763-542-8725
الفاكس: 763-546-4830
البريد الإلكتروني: ***@bitstream.net

-----رسالة أصلية-----
من: histonet-***@lists.utsouthwestern.edu
[mailto: histonet - *** @ lists.utsouthwestern.edu] بالنيابة عن Morken ،
تيم
تاريخ الإرسال: الثلاثاء 26 سبتمبر 2006 الساعة 11:21 صباحًا
إلى: Missy ***@lists.utsouthwestern.edu
الموضوع: RE: [Histonet] عدد كرات الدم البيضاء

هل هذا نوع من المشروع لفصل؟ إذا لم يكن كذلك ، فقم بتسليمها إلى
أمراض الدم. إذا كان الأمر كذلك ، احصل على كتاب نصي عن التكنولوجيا الطبية وابحث عن الدم
عد الخلايا. للقيام بذلك بشكل صحيح يتطلب شرائح عد خاصة
محفور بشبكات.

-----رسالة أصلية-----
من: histonet-***@lists.utsouthwestern.edu
[mailto: histonet - *** @ lists.utsouthwestern.edu] نيابة عن Missy
تاريخ الإرسال: الثلاثاء 26 سبتمبر 2006 الساعة 7:25 صباحًا
إلى: ***@lists.utsouthwestern.edu
الموضوع: [Histonet] عدد كرات الدم البيضاء

تحية للجميع.
لم نقم مطلقًا بإحصاء WBC يدويًا من قبل وقد سألني مستشاري
للحصول على عدد كرات الدم البيضاء (الخلايا الدقيقة والخلايا الليمفاوية في المقام الأول) في
لطخات الدم المحيطية الملطخة في رايت. ما هو البروتوكول العام
لحساب يدوي؟ هل تحسب علاقة inb الخاصة بـ WBC بـ كرات الدم الحمراء أم فقط
كرات الدم البيضاء ، الشريحة بأكملها ، أو الأقسام التمثيلية فقط؟

PS - هذا لعينة الفئران ، وليس الإنسان
_______________________________________________
قائمة بريدية هيستونيت
***@lists.utsouthwestern.edu
http://lists.utsouthwestern.edu/mailman/listinfo/histonet

نشتري أجهزة قياس الكريات من Fisher (كتالوج الرعاية الصحية) أو VWR. نحن
لا يزال استخدامها لغسيل الرئة / غسيل من الفئران. ونقوم بإحصاء الخلايا
ويعرف أيضًا باسم الفروق على Diff Quik (إذا كان بإمكانك الحصول عليها دون صعوبة)
غسل رئة الفئران الملطخة / السيتوسبين. إذا كان عليك القيام بعمل تفاضل على
مسحات دم الحيوانات ، معاطف بافي ، بقعة رايت جيمسا رائعة لهذا الغرض
الغرض ، ماركة Harleco.

بالنسبة لعدد WBC ، اتصل بالمختبر السريري لتشغيل عدد WBC
عداداتهم الآلية ، أكثر دقة بكثير وتستحق التكلفة. كان
مؤلم للعمل مع ماصات RBC و WBC - HOORAY للحديثة
التكنولوجيا والأجهزة.

أهلا
أظن أن كل ما يريده مرشدك هو الحصول على قريب
كميات كل من الكريات البيض.
للقيام بذلك ، حدد منطقة من مسحة الدم حيث توجد خلايا الدم الحمراء
يتم فصلها قليلا. تجنب الكتل حيث تكون اللطاخة سميكة أو
نهايات الذيل من اللطاخة حيث قد تتكتل الخلايا البيضاء و
المحرفة.

من الناحية المثالية ، يجب أن تكون خلايا الدم الحمراء زهرية السلمون. إذا كانت حمراء ثم
all the colors that you have in a description of the white cells will be
shifted towards the red, if the red blood cells are slate blue then
similarly all the colors will be shifted towards the blue.

Start by counting the white cells in the first field.
Move the slide one field over say to the right. Count these cell types.
Then move one field down and count.
Then one field to the right and count.
Then up one field and count.
Repeat this procedure until you have counted at least 200 preferably
more leukocytes.
If you get to the end of the slide or in an undesirable area during
moving then move down one field and repeat this but moving to the left
إلخ.
This is the battlement method of counting and will give you a
differential count of leukocytes.
The more leukocytes you count the more accurate your percentages.
You may have trouble in finding basophils as they are only present in
the order of 0.5 to 1%.
Hope that this helps
Barry

-----Original Message-----
From: histonet-***@lists.utsouthwestern.edu
[mailto:histonet-***@lists.utsouthwestern.edu] On Behalf Of Poteete,
Jacquie A.
Sent: Tuesday, September 26, 2006 2:39 PM
To: Ford Royer Missy ***@lists.utsouthwestern.edu
Subject: RE: [Histonet] WBC counts

Good luck finding a hemacytometer and/or any calibrated pipettes. Ours
ended up in the display of "antique instruments and equipment". هذا
the best place for them (speaking as an old dinosaur who actually
learned how to use them).

Jacquie Poteete MT(ASCP)QIHC
Lead Medical Technologist, IHC Laboratory
Saint Francis Hospital, Tulsa, OK

-----Original Message-----
From: histonet-***@lists.utsouthwestern.edu
[mailto:histonet-***@lists.utsouthwestern.edu] On Behalf Of Ford
Royer
Sent: Tuesday, September 26, 2006 2:24 PM
To: 'Missy' ***@lists.utsouthwestern.edu
Subject: RE: [Histonet] WBC counts

It sounds like your advisor wants a "differential" WBC if you are
attempting to do it on a stained peripheral blood smear. To do this you
would need some type of multi-key manual differential counter (example:
http://stores.implex.net/minnesotamedical/product_info.php?cPath=205_174
_176
&products_id=1726)

To do this you assign a key on the counter to a specific white cell
(بمعنى آخر.
nuetrophils) and do the same for the rest of the keys with the different
types of white cells. You then scan the slide and count the different
white cells (punching the proper key for each) until you reach a total
count of 100 cells (pay no attention to the red cells). لك
differential would then be the number of specific cells counted express
كنسبة مئوية. Example, you counted 62 nuetrophils and 38 lymphocytes
= 62% neturo & 38% Lymphs respectively.

To do a total WBC, you would have to have a hemocytometer (what Tim was
talking about), calibrated hemo pipettes, a lysing reagent, normal
saline diluent, and WHOLE blood. You would dilute the whole blood to
the proper dilution with normal saline, add the lysing reagent to
destroy the red cells, load the hemocytometer, and count all the white
cells you see.

Or, as Tom suggested. give the assignment to the Hematology
Department.
-)

Ford M. Royer, MT(ASCP)
Histology Product Manager
Minnesota Medical, Inc.
7177 Madison Ave. W.
Golden Valley, MN 55427-3601
CELL: 612-839-1046
Phone: 763-542-8725
Fax: 763-546-4830
eMail: ***@bitstream.net

-----Original Message-----
From: histonet-***@lists.utsouthwestern.edu
[mailto:histonet-***@lists.utsouthwestern.edu] On Behalf Of Morken,
تيم
Sent: Tuesday, September 26, 2006 11:21 AM
To: Missy ***@lists.utsouthwestern.edu
Subject: RE: [Histonet] WBC counts

Is this some kind of project for a class? If not, hand it over to
hematology. If so, get a medical technology text book and look up blood
cell counting. To do it right requires special counting slides that are
etched with grids.

-----Original Message-----
From: histonet-***@lists.utsouthwestern.edu
[mailto:histonet-***@lists.utsouthwestern.edu] On Behalf Of Missy
Sent: Tuesday, September 26, 2006 7:25 AM
To: ***@lists.utsouthwestern.edu
Subject: [Histonet] WBC counts

تحية للجميع.
We have never done a manual WBC count before and my advisor has asked me
to get a count of WBCs (primarily nuetrophils and lymphocytes) in
wright's stained peripheral blood smears. What is the general protocol
for a manual count? Do you count WBC's inb relation to RBCs or just
WBCs, the whole slide, or just representative sections?

P.S - this is for rat sample, not human
_______________________________________________
Histonet mailing list
***@lists.utsouthwestern.edu
http://lists.utsouthwestern.edu/mailman/listinfo/histonet

_______________________________________________
Histonet mailing list
***@lists.utsouthwestern.edu
http://lists.utsouthwestern.edu/mailman/listinfo/histonet

Just a general tech-note. if you have the clinical lab run your whole
blood samples through their automated counters, make sure you inform them
what species the sample is from. You mentioned that you are working with
rats, so it should not be a problem with them getting an accurate WBC count.
In some species (i.e. birds) the RBCs are nucleated and will not completely
lyse with standard lysing reagents and therefore the RBCs could be
erroneously counted as WBCs giving a elevated count. Regardless, it is
important that your hematology department knows the species of the sample
that you are asking them to run through their analyzer.

Ford M. Royer, MT(ASCP)
Histology Product Manager
Minnesota Medical, Inc.
7177 Madison Ave. W.
Golden Valley, MN 55427-3601
CELL: 612-839-1046
Phone: 763-542-8725
Fax: 763-546-4830
eMail: ***@bitstream.net

-----Original Message-----
From: histonet-***@lists.utsouthwestern.edu
[mailto:histonet-***@lists.utsouthwestern.edu] On Behalf Of Gayle Callis
Sent: Tuesday, September 26, 2006 3:22 PM
To: Poteete, Jacquie A. ***@lists.utsouthwestern.edu
Subject: RE: [Histonet] WBC counts

We purchase hemocytometers from Fisher (Healthcare catalog) or VWR. نحن
still use them for lung lavage/washings from mice. AND we do cell count
aka differentials on Diff Quik (if you can get it without difficulty)
stained murine lung lavage/cytospins. If you have to do a differential on
animal blood smears, buffy coats, Wright Giemsa stain is superb for this
purpose, Harleco brand.

For a WBC count, contact a clinical laboratory to run the WBC counts on
their automated counters, much more accurate and worth the cost. كان
painful to work with the RBC and WBC pipettes - HOORAY for modern
technology and instrumentation.

Gayle Callis
MT,HT,HTL(ASCP)
Research Histopathology Supervisor
Veterinary Molecular Biology
Montana State University - Bozeman
PO Box 173610
Bozeman MT 59717-3610
406 994-6367
406 994-4303 (FAX)


الاستنتاجات

In this study, we proposed the development of a novel biological fuel cell that can utilize the body's own resources to generate electricity, through specific electrochemical interactions between cells and electrodes in close proximity. The motivation of this study is to develop a BFC that can be used to power implantable medical devices, including micro- and nano- biosensors for either therapeutic or physiological monitoring purposes. The study seeks to demonstrate that electron transfer between human white blood cells and an interfacing electrode can occur through any or all of three possible mechanisms: 1) direct electron transfer through membrane bound redox species (such as the flavocytochrome of NADPH oxidase) 2) indirect electron transfer through exocytosed non-metabolic biochemical species (e.g. serotonin) and 3) indirect electron transfer through exocytosed metabolically relevant biochemical species. Our results indicate that activated white blood cells can generate small electrical currents when introduced into the anode compartment of a proton exchange membrane fuel cell, with ferricyanide in the cathode compartment. Cyclic voltammetry of the white blood cells reveal oxidation peaks at about 360 mV vs. SCE. Peaks at this potential have been attributed to serotonin release. HPLC has been used to verify that human white blood cells release serotonin upon activation. Various white blood cell lines do not release serotonin, indicating that the isolated cells may uptake serotonin from the blood stream rather than metabolize it themselves.


Species specific White Blood Cells (WBC) composition - Biology

White blood cells, also called leukocytes, are cells that exist in the blood, the lymphatic system, and tissues and are an important part of the body's defense system. They help protect against infections and also have a role in inflammation, and allergic reactions. The white blood cell (WBC) count totals the number of white blood cells in a sample of your blood. It is one test among several that is included in a complete blood count (CBC), which is often used in the general evaluation of your health.

Blood is made up of three main types of cells suspended in fluid called plasma. In addition to WBCs, there are red blood cells and platelets. All of these cells are made in the bone marrow and are released into the blood to circulate.

There are five types of WBCs, and each has a different function:

  • Three types of WBCs are referred to as "granulocytes" because of the granules present in their cytoplasm. These granules release chemicals and other substances as part of the immune response. Granulocytes include:
      (neu) normally make up the largest number of circulating WBCs. They move into an area of damaged or infected tissue, where they engulf and destroy bacteria or sometimes fungi. (eos) respond to infections caused by parasites, play a role in allergic reactions (hypersensitivities), and control the extent of immune responses and inflammation. (baso) usually make up the fewest number of circulating WBCs and are thought to be involved in allergic reactions.
    • B lymphocytes (B cells) produce antibodies as part of the body’s natural defense (immune) responses.
    • T lymphocytes (T cells) recognize foreign substances and process them for removal.
    • Natural killer cells (NK cells) directly attack and kill abnormal cells such as cancer cells or those infected with a virus.

    When there is an infection or an inflammatory process somewhere in the body, the bone marrow produces more WBCs, releasing them into the blood, and through a complex process, they move to the site of infection or inflammation. As the condition resolves, the production of WBCs by the bone marrow subsides and the number of WBCs drops to normal levels again.

    In addition to infections and inflammation, there are a number of conditions that can affect the production of WBCs by the bone marrow or the survival of WBCs in the blood, such as cancer or an immune disorder, resulting in either increased or decreased numbers of WBCs in the blood. The WBC count, along with the other components of the CBC, alerts a healthcare practitioner to possible health issues. Results are often interpreted in conjunction with additional tests, such as a WBC differential and a blood smear review. A differential may provide information on which type of WBC may be low or high, and a blood smear may show the presence of abnormal and/or immature WBCs.

    If results indicate a problem, a wide variety of other tests can be performed to help determine the cause. A healthcare practitioner will typically consider an individual's signs and symptoms, medical history, and results of a physical examination to decide what other tests may be necessary. For example, as needed, a bone marrow biopsy will be performed to evaluate the bone marrow status.

    قد تتمكن من العثور على نتائج الاختبار الخاصة بك على موقع الويب الخاص بالمختبر أو بوابة المريض. ومع ذلك ، فأنت حاليًا في Lab Tests Online. ربما تم توجيهك إلى هنا من خلال موقع الويب الخاص بالمختبر الخاص بك لتزويدك بمعلومات أساسية حول الاختبار (الاختبارات) الذي أجريته. ستحتاج إلى العودة إلى موقع الويب أو البوابة الخاصة بمختبرك ، أو الاتصال بممارس الرعاية الصحية الخاص بك من أجل الحصول على نتائج الاختبار.

    Lab Tests Online هو موقع ويب تعليمي للمرضى حائز على جوائز يقدم معلومات عن الاختبارات المعملية. يوفر المحتوى الموجود على الموقع ، والذي تمت مراجعته من قبل علماء المختبرات وغيرهم من المتخصصين الطبيين ، تفسيرات عامة لما قد تعنيه النتائج لكل اختبار مدرج في الموقع ، مثل القيمة العالية أو المنخفضة التي قد توحي لممارس الرعاية الصحية الخاص بك بشأنك. الصحة أو الحالة الطبية.

    يمكن العثور على النطاقات المرجعية لاختباراتك في تقرير المختبر الخاص بك. يتم العثور عليها عادة على يمين نتائجك.

    إذا لم يكن لديك تقرير مخبري ، فاستشر مقدم الرعاية الصحية أو المختبر الذي أجرى الاختبار (الاختبارات) للحصول على النطاق المرجعي.

    نتائج الاختبارات المعملية ليست ذات مغزى في حد ذاتها. يأتي معناها من المقارنة مع النطاقات المرجعية. النطاقات المرجعية هي القيم المتوقعة لشخص سليم. يطلق عليهم أحيانًا القيم "العادية". من خلال مقارنة نتائج الاختبار مع القيم المرجعية ، يمكنك أنت ومقدم الرعاية الصحية الخاص بك معرفة ما إذا كانت أي من نتائج الاختبار الخاصة بك تقع خارج نطاق القيم المتوقعة. يمكن أن توفر القيم التي تقع خارج النطاقات المتوقعة أدلة للمساعدة في تحديد الحالات أو الأمراض المحتملة.

    في حين أن دقة الاختبارات المعملية قد تطورت بشكل كبير على مدى العقود القليلة الماضية ، يمكن أن تحدث بعض التباين من المختبر إلى المعمل بسبب الاختلافات في معدات الاختبار ، والكواشف الكيميائية ، والتقنيات. هذا هو سبب عدم توفير نطاقات مرجعية قليلة على هذا الموقع. من المهم أن تعرف أنه يجب عليك استخدام النطاق الذي قدمه المختبر الذي أجرى اختبارك لتقييم ما إذا كانت نتائجك "ضمن الحدود الطبيعية".

    لمزيد من المعلومات ، يرجى قراءة مقالة النطاقات المرجعية وماذا تعني.

    The reference ranges 1 provided here represent a theoretical guideline that should not be used to interpret your test results. Some variation is likely between these numbers and the reference range reported by the lab that ran your test. Please consult your healthcare provider.

    سن Conventional Units 2 SI Units 3
    0-18 years Not available due to wide variability. See child's lab report for reference range.
    الكبار 4,500-11,000 white blood cells per microliter (mcL) 4.5-11.0 x 10 9 per liter (L)

    1 from Wintrobe's Clinical Hematology. 12th ed. Greer J, Foerster J, Rodgers G, Paraskevas F, Glader B, Arber D, Means R, eds. Philadelphia, PA: Lippincott Williams & Wilkins: 2009.


    معلومات تكميلية

    The authors thank Georg Hofer (Department of Anesthesiology and Critical Care Medicine, General Hospital of Silandro, Italy), Karla Balkenhol, Michael Pohl and Emily Procter (Eurac Research, Institute of Mountain Emergency Medicine, Bolzano, Italy), and Piergiorgio Lochner (Department of Neurology, University of the Saarland, Homburg, Germany) for invaluable support during data and sample collection and Tomas Dal Cappello (Eurac Research, Institute of Mountain Emergency Medicine, Bolzano, Italy) for support with the statistical analysis. The authors thank the Department of Innovation, Research and University of the Autonomous Province of Bozen/Bolzano for covering the Open Access publication costs.


    Species specific White Blood Cells (WBC) composition - Biology

    In the event of bacterial infection, large numbers of neutrophils migrate from the blood to the infected site in order to destroy the invading microorganism and thus protect the host. The neutrophils removed from the peripheral blood are then replaced by other neutrophils, at various stages of maturation, from the bone marrow pool. The total number and composition of neutrophils in the blood are therefore altered dramatically at this time.

    Fig. 1. Neutrophil consumption by tissues in the absence of bacterial infection.
    Neutrophils, primarily segmented neutrophils and to a lesser extent band neutrophils, migrate from the bone marrow into peripheral blood, before infiltrating organ tissues.

    It generally takes seven days for neutrophils to mature in the bone marrow, and the bone marrow pool contains neutrophils at various maturation stages, from immature myeloblasts, through promyelocytes, myelocytes, metamyelocytes, and non-segmented/band neutrophils, to segmented neutrophils, the most mature type of cell (Fig.1). During bacterial infection, the shortage of mature neutrophils in the peripheral blood means that more immature cells, such as myelocytes, metamyelocytes, and band neutrophils are also released this phenomenon is called ‘left shift’ (Fig. 2).

    The course of a bacterial infection can be divided into four phases using a combination of the white blood cell (WBC) count, which is almost the same as the neutrophil count, and the degree of left shift. During the first phase, occurring between 0 and 20 hours after the onset of infection, the neutrophil count, whether considering the left shift or not, briefly falls below the reference range. The consumption of neutrophils at the site of bacterial infection exceeds the capacity of the bone marrow to produce replacements. At the early stage, a left shift is not observed. During the second phase, which occurs between one and several days after the onset of infection, the neutrophil count increases as the supply from the bone marrow exceeds consumption at the infection site, and a left shift is observed. During the third phase, which occurs in the days following the second phase, high neutrophil counts continue to be seen, but without a left shift, as sufficient cells can be supplied to the infection site without increasing production in the bone marrow. By this stage, the bacterial infection is largely eliminated. During the fourth and final phase, occurring in the days following the third phase, the neutrophil count gradually decreases until it reaches the reference range, and no left shift is observed. At this stage the infection has been eliminated, and a large neutrophil population is no longer necessary.

    That said, some severe bacterial infections, including meningitis, infective endocarditis, and abscesses, may not show a left shift because the neutrophils in the blood are not continuously depleted, and so the production and release of immature neutrophils into the peripheral blood by the bone marrow is unnecessary.

    Fig. 2. High neutrophil consumption during bacterial infection.
    A large population of neutrophil cells, comprised of metamyelocytes and myelocytes in addition to segmented neutrophils and band neutrophils, migrate from the bone marrow into the peripheral blood before infiltrating the site of bacterial infection.

    Generally, there are dramatic changes in left shift and WBC count over the course of a bacterial infection, and a combination of these factors can be used for diagnostic purposes. Therefore, a time-series analysis of these parameters, comprising a minimum of two points, could improve the sensitivity and specificity of both the diagnosis of a bacterial infection and the evaluation of its progression. The left shift principally depends on the response of the bone marrow to neutrophil depletion from the blood, and so can be used to diagnose bacterial infections with high specificity. Therefore, if a left shift is observed upon admission, a bacterial infection should be suspected, and if this value increases within a few hours, a diagnosis of a bacterial infection can be made. Additionally, an assessment of both the left shift and WBC count can be used to evaluate the severity of bacterial infection and whether antibiotic treatment is appropriate.

    Takayuki Honda
    Department of Laboratory Medicine, Shinshu University School of Medicine, Asahi 3-1-1, Matsumoto, Japan


    شاهد الفيديو: How White Blood Cells Are Formed YouTube (ديسمبر 2022).